
Indexat a
Llicència i ús
Anàlisi d'autories institucional
Phelps, AAutor o coautorPazos-Castro, DAutor o coautorTome-Amat, JAutor o coautorProduction and use of antigen tetramers to study antigen-specific B cells
Publicat a:Nature Protocols. 19 (3): 727-751 - 2024-03-01 19(3), DOI: 10.1038/s41596-023-00930-8
Autors: Phelps, A; Pazos-Castro, D; Urselli, F; Grydziuszko, E; Mann-Delany, O; Fang, A; Walker, TD; Guruge, RT; Tome-Amat, J; Diaz-Perales, A; Waserman, S; Boonyaratanakornkit, J; Jordana, M; Taylor, JJ; Koenig, JFE
Afiliacions
Resum
B cells generate antibodies that provide protection from infection, but also cause pathology in autoimmune and allergic conditions. Antigen-specific B cells can be detected by binding their surface antibody receptors with native antigens conjugated to fluorescent probes, a technique that has revealed substantial insight into B cell activation and function. This protocol describes the process of generating fluorescent antigen tetramer probes and delineates a process of enriching large samples based on antigen-specificity for high-resolution analyses of the antigen-specific B cell repertoire. Enrichment of tetramer-binding cells allows for detection of antigen-specific B cells as rare as 1 in 100 million cells, providing sufficient resolution to study naive B cells and IgE-expressing cells by flow cytometry. The generation of antigen tetramers involves antigen biotinylation, assessment of biotin:antigen ratio for optimal tetramer loading and polymerization around a streptavidin-fluorophore backbone. We also describe the construction of a control tetramer to exclude B cells binding to the tetramer backbone. We provide a framework to validate whether tetramer probes are detecting true antigen-specific B cells and discuss considerations for experimental design. This protocol can be performed by researchers trained in basic biomedical/immunological research techniques, using instrumentation commonly found in most laboratories. Constructing the antigen and control tetramers takes 9 h, though their specificity should be assessed before experimentation and may take weeks to months depending on the method of validation. Sample enrichment requires similar to 2 h but is generally time and cost neutral as fewer cells are run through the flow cytometer.
Paraules clau
Indicis de qualitat
Impacte bibliomètric. Anàlisi de la contribució i canal de difusió
El treball ha estat publicat a la revista Nature Protocols a causa de la seva progressió i el bon impacte que ha aconseguit en els últims anys, segons l'agència WoS (JCR), s'ha convertit en una referència en el seu camp. A l'any de publicació del treball, 2024 encara no hi ha indicis calculats, però el 2023, es trobava a la posició 2/85, aconseguint així situar-se com a revista Q1 (Primer Cuartil), en la categoria Biochemical Research Methods. Destacable, igualment, el fet que la revista està posicionada per sobre del Percentil 90.
Independentment de l'impacte esperat determinat pel canal de difusió, és important destacar l'impacte real observat de la pròpia aportació.
Segons les diferents agències d'indexació, el nombre de citacions acumulades per aquesta publicació fins a la data 2025-05-28:
- WoS: 1
- Scopus: 4
- OpenCitations: 2
Impacte i visibilitat social
Anàlisi del lideratge dels autors institucionals
Aquest treball s'ha realitzat amb col·laboració internacional, concretament amb investigadors de: Canada; United States of America.
Hi ha un lideratge significatiu, ja que alguns dels autors pertanyents a la institució apareixen com a primer o últim signant, es pot apreciar en el detall: Primer Autor (DIAZ PERALES, ARACELI) .