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Phelps, AAutor o CoautorPazos-Castro, DAutor o CoautorTome-Amat, JAutor o CoautorProduction and use of antigen tetramers to study antigen-specific B cells
Publicado en:Nature Protocols. 19 (3): 727-751 - 2024-03-01 19(3), DOI: 10.1038/s41596-023-00930-8
Autores: Phelps, A; Pazos-Castro, D; Urselli, F; Grydziuszko, E; Mann-Delany, O; Fang, A; Walker, TD; Guruge, RT; Tome-Amat, J; Diaz-Perales, A; Waserman, S; Boonyaratanakornkit, J; Jordana, M; Taylor, JJ; Koenig, JFE
Afiliaciones
Resumen
B cells generate antibodies that provide protection from infection, but also cause pathology in autoimmune and allergic conditions. Antigen-specific B cells can be detected by binding their surface antibody receptors with native antigens conjugated to fluorescent probes, a technique that has revealed substantial insight into B cell activation and function. This protocol describes the process of generating fluorescent antigen tetramer probes and delineates a process of enriching large samples based on antigen-specificity for high-resolution analyses of the antigen-specific B cell repertoire. Enrichment of tetramer-binding cells allows for detection of antigen-specific B cells as rare as 1 in 100 million cells, providing sufficient resolution to study naive B cells and IgE-expressing cells by flow cytometry. The generation of antigen tetramers involves antigen biotinylation, assessment of biotin:antigen ratio for optimal tetramer loading and polymerization around a streptavidin-fluorophore backbone. We also describe the construction of a control tetramer to exclude B cells binding to the tetramer backbone. We provide a framework to validate whether tetramer probes are detecting true antigen-specific B cells and discuss considerations for experimental design. This protocol can be performed by researchers trained in basic biomedical/immunological research techniques, using instrumentation commonly found in most laboratories. Constructing the antigen and control tetramers takes 9 h, though their specificity should be assessed before experimentation and may take weeks to months depending on the method of validation. Sample enrichment requires similar to 2 h but is generally time and cost neutral as fewer cells are run through the flow cytometer.
Palabras clave
Indicios de calidad
Impacto bibliométrico. Análisis de la aportación y canal de difusión
El trabajo ha sido publicado en la revista Nature Protocols debido a la progresión y el buen impacto que ha alcanzado en los últimos años, según la agencia WoS (JCR), se ha convertido en una referencia en su campo. En el año de publicación del trabajo, 2024 aún no existen indicios calculados, pero en 2023, se encontraba en la posición 2/85, consiguiendo con ello situarse como revista Q1 (Primer Cuartil), en la categoría Biochemical Research Methods. Destacable, igualmente, el hecho de que la Revista está posicionada por encima del Percentil 90.
2025-06-10:
- WoS: 1
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Impacto y visibilidad social
Análisis de liderazgo de los autores institucionales
Este trabajo se ha realizado con colaboración internacional, concretamente con investigadores de: Canada; United States of America.
Existe un liderazgo significativo ya que algunos de los autores pertenecientes a la institución aparecen como primer o último firmante, se puede apreciar en el detalle: Primer Autor (DIAZ PERALES, ARACELI) .